做什么样子?western blot需要什么?

摘要:

本文介绍了Western blot实验的相关技术和所需试剂及耗材。实验过程包括细胞或组织的裂解、蛋白质的提取和定量、蛋白质的变性和还原、SDS-PAGE凝胶电泳以及转膜等步骤。文中详细阐述了每个步骤的具体操作方法和注意事项,如细胞洗涤、裂解液的使用、蛋白质的离心和保存、BCA蛋白定量、蛋白质的加热煮沸、配胶和电泳等。同时,文章还提到了在内参跑不均匀的情况下如何进行调整,以及如何通过剪切和孵化分别抗体来检测目标蛋白。整体而言,文章旨在帮助实验小白快速掌握Western blot实验技术,并了解如何对实验结果进行抗体分析。

westernblot什么技术和Westernblot需要准备哪些试剂和耗材?11细胞②吸出PBS,加入裂解液(碧云天)P0013;贴壁细胞:去除培养液PBS、再次清洗生理盐水或无血清培养液(如果血清中的蛋白质不受干扰,可以不洗)。

做westernblot需要什么,如何快速掌握实验小白?WesternBlot相关实验

做什么样子?western blot需要什么?

了解WesternBlot学会选择合适的实验过程WB对实验结果进行抗体分析。让我们一起学习吧.

westernblot是什么技术和Westernblot需要准备哪些试剂和耗材?

①将细胞培养皿放在冰上,冷却PBS洗涤细胞2次

②吸出PBS,加入裂解液(碧云天)P0013;1%TritonX-100;)

a.融解Western及IP细胞裂解液,混合均匀。取适量裂解液,使用前几分钟内加入PMSF,使PMSF最终浓度为1mM,或根据实验需要添加适当的蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物。取适量裂解液,使用前几分钟内加入PMSF,使PMSF最终浓度为1mM,或根据实验需要添加适当的蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物。

b.贴壁细胞:用于去除培养液PBS、再次清洗生理盐水或无血清培养液(如果血清中的蛋白质没有干扰,就不能清洗)。裂解液按6孔板每孔100-200微升裂解液的比例加入。用枪吹几下,使裂解液与细胞充分接触。裂解液通常在接触动物细胞1-2秒后裂解。(一般10*7个细胞用100ul裂解后获得的上清蛋白浓度约为2-4mg/ml)

③用刮刀刮掉贴壁细胞,转移到EP管,rpm离心5分钟

④将上清液转移到EP管,负20℃保存

①将组织样品剪成细小碎片(最好在冰上进行)

c.裂解液按每20毫克组织加入100-200微升裂解液的比例加入。(如果裂解不足,可以适当添加更多的裂解液,如果需要高浓度的蛋白质样品,可以适当减少裂解液的用量。(如果裂解不足,可以适当添加更多的裂解液,如果需要高浓度的蛋白质样品,可以适当减少裂解液的用量。

d.用玻璃匀浆器匀浆,直至完全裂解。如果组织样品本身很小,可以在适当剪切后直接加入裂解液,通过强涡旋使样品完全裂解

(每20mg冻结的小鼠肝组织在200微升本裂解液裂解后得到上清,其蛋白质浓度约为15-25mg/ml,不同状态的组织不同)

③充分裂解后,-g离心3-5分钟,取上清

2.蛋白定量(Thermo)

2.1稀释白蛋白(BSA)制备标准液

2.2制备BCA工作液(A液:B液=50:1密闭室温可保存一段时间。

总体积=(#标准孔 #未知孔)#复孔每个样本的体积

测试管每管2ml;96孔板每孔200ul。

①将25ul按样品设置标准液和样品复孔加96孔板:BCA加入工作液(1:8)200ul

BCA工作液(如果样本有限,则添加10ul按样品浓度,可提前稀释5-10倍)

②最好摇匀30秒,将96孔板37秒℃孵育30min

③562nm,所有样钟内测试所有样本。

④所有样本减去空白控制在562nm绘制标准曲线,确定样品浓度

3.变性和还原蛋白质

在蛋白质样品中加入含量SDS上样缓冲液(确保样品中所有蛋白质带电荷一致),100℃加热煮沸。

3.1.室温溶解蛋白上样缓冲液(5)×),按照4uL蛋白样品 1ul(5×)混合比例。

3.1.2100℃或将沸水浴加热10分钟,以充分改变蛋白质

3.1.3冰上骤冷,直接上样到SDS-PAGE胶加样孔即可

3.1.电泳通常可以停止在电泳到达胶水底部附近的蓝色染料

4.SDS-PAGE凝胶电泳

4.根据目的蛋白的大小,选择和制备1胶选择合适的分离胶浓度)

4.配胶(碧云天P0012AC)

将玻璃板清洗干净,装板加水检漏,晾干装在制胶架上。按配方配胶。

(配胶顺序:先配分离胶(下胶),再配浓缩胶(上胶)

4.2.2.制备浓缩胶(上胶)

4.2.3组装制胶器

①将准备好的分离胶倒入胶合板中(缓慢无气泡),然后慢慢加入适量的异丙醇压平分离胶。

②分离胶凝结20-30分钟,倾斜板,倒异丙醇,吸水纸吸去残留液体,放弃上层压胶的水或醇。

②分离胶凝结20-30分钟,倾斜板,倒异丙醇,吸水纸吸去残留液体,放弃上层压胶的水或醇。

③将准备好的浓缩胶倒入制胶板中,然后插入梳子,20-30分钟浓缩胶即可凝结。

④慢慢取出梳子,上样。

4.2.4上样及电泳

①溶解在蛋白冰上,调整蛋白质浓度和等量5×上样缓冲液混合,即为上样液。用纯水冲洗胶合板,放入电泳池

②将电泳液倒入两块板之间,确认无漏液

③迅速拔出梳子,用枪轻轻吹出碎片

④依次添加蛋白质marker以及蛋白质样品,每孔20个样品ug,留一孔预染marker.加满电泳缓冲液,盖上槽盖,连接电源,先用70V恒压电泳,约30min,当指示剂溴酚蓝进入分离胶后,将其改为90V恒压电泳,指示器到达凝胶下端约0.5cm关闭电源,取出胶板。(上样时间尽量短,避免样品扩散,但不能过快避免样品溢出造成相邻加样孔的交叉污染,在未加样孔中加入等量样品缓冲液)

⑤调整电泳的电压和时间,传统胶是上胶80V,30min;下层胶120V90-120min.

(为防止蛋白带再凝胶上扩散,电泳后应尽快转膜)

通过电流将蛋白质凝胶中的蛋白质转移到转印膜上。由于蛋白凝胶本身易碎,蛋白带容易在凝胶中扩散,抗体不易进入凝胶与目的蛋白结合,因此需要在转印膜等固相载体上实现后续的封闭、清洗、颜色显示等实验操作。

①将减好的PVDF膜用无水甲醇湿润30秒以上,然后用ddH2O漂洗2min,浸泡于转移缓冲液中5min后续操作开始

②装配转膜三明治结构(在转移缓冲液中制备三明治可避免气泡)

黑面(负极)→海绵垫→3层滤纸→凝胶→转印膜→3层滤纸→海绵垫→红面(正极),每层之间不能有气泡。然后将三明治转移到电泳池,黑面对黑面。然后将三明治转移到电泳池,黑面对黑面。

跑westernblot我已经调整了上样量。为什么我的内参还跑不均匀?

一般来说,内参的定义是,正常样品中的分子相对稳定。
因此,在实验中做好阳性对照和阴性对照,然后保持与试验处理样品相同的样品量,然后对其进行测试pvdf膜可以通过剪切和孵化分别抗体(内参抗体和目标蛋白的特异性抗体)。

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